Выбрать город: Ереван

    Вы находитесь в городе Ваш город: Ереван

    Выбрать другой
    От выбранного города зависят цены и способы оплаты.
    AM
    0 (800) 000-10 Бесплатный звонок по Армении +(374) 60-65-10-10

    ФЕМОФЛОР-17+КВМ*, соскоб эпителиальных клеток урогенитального тракта

    Описание
    Исследуемый материал Соскоб эпителиальных клеток урогенитального тракта (вагинальный, цервикальный, уретральный)
    Метод определения ПЦР с детекцией в режиме «реального времени».

    Комплексная количественная оценка микробиоценоза урогенитального тракта путем сравнения содержания конкретных представителей нормо– и условно-патогенной биоты с общей бактериальной массой (ОБМ) методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) с детекцией в режиме «реального времени». 


    Выявляемые показатели: 
    • КВМ (контроль взятия материала), ОБМ (общая бактериальная масса), микоплазмы (Mycoplasma hominis, Ureaplasma spp.), дрожжеподобные грибы (Candida spp.) – абсолютные значения; 
    • нормофлора (Lactobacillus spp.), факультативно-анаэробные (Enterobacterium spp., Streptococcus spp., Staphylococcus spp.), облигатно-анаэробные микроорганизмы (Gardnerella vaginalis/Prevotella bivia/Porphyromonas spp., Eubacterium spp., Sneathia spp./Leptotrichia spp./Fusobacterium spp., Megasphaera spp./Veillonella spp./Dialister spp., Lachnobacterium spp./Clostridium spp., Mobiluncus spp./Corinebacterium spp., Peptostreptococcus spp., Atopobium vaginae) – относительные количества генетически родственных групп микроорганизмов в ОБМ;
    • идентификация патогенов (Mycoplasma genitalium).
    Под «spp.» подразумевается широкая группа микроорганизмов, значимая для диагностики дисбиоза.

     
    Микробиоценоз влагалища женщин репродуктивного возраста - хорошо сбалансированная и устойчивая система. В норме в этом биотопе существуют микроорганизмы, способные выжить, сосуществовать и развиваться в конкретной физической среде, не вызывая заболевания макроорганизма.

    Доминирующими агентами в микробиоценозе являются лактобактерии, продуктом жизнедеятельности которых является a-оксипропионовая молочная кислота, которая создаёт кислую реакцию влагалищного содержимого. Кроме кислой среды размножению патогенных микроорганизмов препятствуют образующаяся в результате жизнедеятельности лактобацилл перекись водорода, лизоцим и другие гликолитические ферменты. Помимо лактобактерий, в урогенитальном тракте здоровой женщины репродуктивного возраста может обнаруживаться более ста видов различных бактериальных микроорганизмов, грибов, вирусов и простейших.

    Возникновение нарушений количественно-качественных взаимоотношений резидентных микроорганизмов - сапрофитных и условно-патогенных, населяющих мочеполовую систему в норме, приводит к возникновению дисбаланса. Развитие дисбаланса микробиоценоза может сопровождаться метаболическими, иммунными нарушениями и в ряде случаев клиническими проявлениями, степень выраженности которых варьируется от бессимптомного носительства до выраженной клинической манифестации.

    В связи с вышеизложенным, такие нозологии как бактериальный вагиноз, урогенитальный кандидоз, заболевания, ассоциированные с микоплазмой, могут рассматриваться как частные случаи проявления дисбаланса микробиоценоза.

    В настоящее время для установления диагноза используют традиционные методы клинической и лабораторной диагностики. Этиологически значимые инфекционные агенты выявляются с помощью методов лабораторного исследования: микроскопии нативных и окрашенных метиленовым синим и по Граму препаратов, культурального исследования (5% кровяной агар, среда Эндо, жидкие и твёрдые среды Сабуро), ПЦР-диагностики.

    Стандартные методы лабораторной диагностики урогенитальных инфекций имеют ряд объективных ограничений; качество выполнения исследований во многом определяется профессиональной квалификацией врача клинической лабораторной диагностики.

    Микроскопия мазков, окрашенных по Граму, позволяет определить:
    1. количество и морфотинкториальные характеристики эпителиоцитов;
    2. количество лейкоцитов, наличие фагоцитоза;
    3. морфотипы микроорганизмов (10 морфотипов);
    4. относительную количественную характеристику общего числа микроорганизмов в исследуемом препарате.
    Объективные ограничения светооптической микроскопии позволяют идентифицировать только 10 морфотипов: Lactobacillus spp., Gardnerella vaginalis, Bacteroides spp., Mobiluncus spp., Fusobacterium spp., Leptotrihia spp., Veillonella spp., Candida spp., грамположительные кокки, колиформные палочки, при этом многие виды этиологически значимых облигатных и условно-патогенных возбудителей выявить невозможно. Кроме того, микроскопия даёт приблизительную количественную оценку биоценоза, что особенно существенно в определении этиологического значения выявленных условно-патогенных микроорганизмов в развитии воспалительного процесса у конкретной пациентки. Существенными недостатками также являются субъективизм и зависимость результата исследования от профессиональной квалификации врача клинической лабораторной диагностики.

    Классическая микробиология до настоящего времени является «золотым стандартом» лабораторной диагностики, поскольку позволяет выполнить количественную характеристику, идентифицировать микроорганизм до вида и определить чувствительность выделенного штамма к лекарственным препаратам. Однако и этот метод не лишён ряда недостатков. Условно-патогенные микроорганизмы, главным образом, представлены анаэробными и факультативно-анаэробными микроорганизмами, для культивирования которых требуются высококачественные селективные питательные среды, специализированные лаборатории, оснащённые необходимым лабораторным оборудованием для выращивания анаэробов, специальная подготовка медицинского персонала лаборатории и высокий профессионализм исследователей. Неизбежно снижение эффективности метода в связи с объективными и субъективными погрешностями. Недостатком метода являются также длительные сроки культивирования (в среднем 7 дней) и необходимость сохранения жизнеспособности микроорганизмов до момента поступления биоматериала в лабораторию. Кроме того, ряд этиологически значимых микроорганизмов относятся к труднокультивируемым, что не позволяет основывать верификацию диагноза на результатах культурального исследования.

    Метод ПЦР с детекцией результата по окончании реакции без количественного определения инфекционного возбудителя позволяет быстро и эффективно выявить искомый патогенный или условно-патогенный микроорганизм, минуя стадию культивирования и выделения чистых культур. Однако выявление условно-патогенных микроорганизмов без учёта количества конкретного микроорганизма и количественно-качественного состава исследуемого биотопа в целом, не позволяет определить этиологическое значение выявленных условно-патогенных микроорганизмов в развитии инфекционно-воспалительного процесса у конкретного пациента.

    Решением проблемы количественной оценки широкого спектра условно-патогенных микроорганизмов является новый способ диагностики (патент на изобретение № 2362808 от 13.02.2008 г. «Способ диагностики дисбаланса микробиоты различных биотопов человека и степени его выраженности»), основанный на использовании метода ПЦР с детекцией результатов в режиме реального времени (RT-PCR). С его помощью стало возможным количественное обнаружение клинически значимых трудно- и некультивируемых условно-патогенных микроорганизмов - грамположительных бактерий (Atopobium vaginae), облигатно-анаэробных грамотрицательных бактерий (Prevotella, Veilonella spp, Porphyromonas spp, Fusobacterium spp, Eubacterium spp, Sneathia, Leptotrichia, Megasphaera, Dialister, Lachnobacterium)‏.

    В основу способа положена комплексная количественная оценка микробиоценоза урогенитального тракта путем сравнения содержания конкретных представителей нормо– и условно-патогенной биоты с общей бактериальной массой (ОБМ):
    • сравнение количества лактобактерий с ОБМ даёт возможность оценить выраженность нарушений нормофлоры;
    • соотношение количеств условных патогенов в ОБМ позволяет определять значимость тех или иных микроорганизмов в развитии дисбаланса и степень его выраженности;
    • качество взятия соскоба и адекватность результата исследования оценивается с помощью специального параметра – контроля взятия материала (КВМ). КВМ представляет собой количество геномной ДНК человека в биоматериале, источником которой являются эпителиальные клетки, попадающие в пробу при правильной технике взятия биоматериала;
    • результаты количественных исследований методом RT-PCR не только дают возможность врачу определять объём необходимого вмешательства, но и позволяют выбрать точную направленность терапии;
    • впервые можно оценить эффективность лечения и то, насколько удалось восстановить нормальный баланс биоценоза. В ходе исследования за короткий промежуток времени из одной биопробы выполняется количественная оценка КВМ, ОБМ (степень обсеменённости), нормофлоры, факультативно-анаэробных и облигатно-анаэробных микроорганизмов, дрожжеподобных грибов, патогенов.
    Материал для исследований. Для исследования женщин в репродуктивном возрасте используют соскобы эпителиальных клеток из влагалища (заднебоковые своды). Соскобы из уретры и цервикального канала могут быть исследованы по решению врача; в этих случаях трактовка результатов отличается.

    Особенности взятия материала из влагалища: материал должен быть взят ДО проведения мануального исследования. Соскоб берут с верхнего бокового или верхнего заднего свода влагалища. У девочек взятие материала производят со слизистой оболочки преддверия влагалища, а в отдельных случаях - из заднего свода влагалища через гименальные кольца.

    Особенности взятия материала из уретры: перед взятием биоматериала пациенту рекомендуется воздержаться от мочеиспускания в течение 1,5-2 часов; непосредственно перед взятием биоматериала наружное отверстие уретры необходимо обработать тампоном (который можно смочить стерильным физиологическим раствором); при наличии гнойных выделений соскоб рекомендуется брать через 15-20 минут после мочеиспускания, при отсутствии выделений необходимо провести массаж уретры с помощью зонда для взятия биоматериала; в уретру у женщин зонд вводится на глубину 1-1,5 см, у детей материал для исследования берут только с наружного отверстия уретры.

    Особенности взятия материала из цервикального канала: перед взятием материала необходимо УДАЛИТЬ ватным тампоном СЛИЗЬ и затем обработать шейку матки стерильным физиологическим раствором; зонд вводится в цервикальный канал на глубину 0,5-1,5 см; при извлечении зонда необходимо полностью исключить его касание стенок влагалища.

    Порядок взятия материала в пробирку с транспортной средой. Открыть крышку пробирки. С помощью одноразового зонда сделать соскоб эпителиальных клеток. Перенести зонд с биоматериалом в пробирку с транспортной средой, зонд тщательно прополоскать в транспортной среде, затем извлечь и выбросить (при необходимости взятия биоматериала из нескольких биотопов, повторить процедуру, каждый раз забирая материал новым зондом в новую пробирку). Исключить попадание гноя или слизи в пробирку. Пробирку плотно закрыть крышкой и промаркировать.

    Транспортировка и хранение исследуемого материала. ВНИМАНИЕ! Время от взятия материала до начала исследования не должно превышать 24 часов. Транспортировать и хранить образцы до начала исследования при +2...+8°С. В случае невозможности доставки материала в лабораторию в течение 24 часов допускается однократное замораживание материала на срок до 1 месяца.

    Обратите внимание на учебное пособие для врачей! Урогенитальные инфекции, обусловленные условно-патогенной биотой, у женщин.

    * КВМ - Контроль взятия материала

     

    Литература

    • Болдырева М.Н., Липова Е.В., Алексеев Л.П., Витвицкая Ю.Г., Гуськова И. А. Характеристика биоты урогенитального тракта у женщин репродуктивного возраста методом ПЦР в режиме реального времени. Журнал акушерства и женских болезней, 2009, том LVIII, выпуск 6, стр 36-42.
    • Плотко Е.Э., Ворошилина Е.С., Хаютин Л.В., Абакумова Е.И., Тумбинская Л.В., Донников А.Е. Репродуктивное поведение женщины и состояние биоценоза влагалища. Уральский медицинский журнал, №10(64), 2009г., стр.150-154.
    • Шипицына Е.В., Мартикайнен З.М., Воробьева Н.Е., Ермошкина М.С., Степанова О.С., Донников А.Е.,Скоркина Ю.А., Тумбинская Л.В., Савичева А.М. Применение теста Фемофлор для оценки микробиоценоза влагалища. Журнал акушерства и женских болезней, №3, 2009г., стр.38-44.
    • Robert P. Nugent et al. Reliability of diagnosing bacterial vaginosis is improved by a standardized method of Gram stain interpretation // Journal of clinical microbiology, Feb. 1991, p. 297-301.
    • Уварова Е.В. and Султанова Ф.Ш., Влагалище как микроэкосистема в норме и при воспалительных процессах гениталий различной этиологии (обзор литературы). Гинекология, 2002. 4(4): p. 189–195.
    • Сухих Г.Т., Прилепская В.Н., Трофимов Д.Ю., Донников А.Е., Айламазян Э.К., Савичева А.М., Шипицына Е.В. Применение метода полимеразной цепной реакции в реальном времени для оценки микробиоценоза урогенитального тракта у женщин (тест Фемофлор). Москва, 2011.
    Подготовка
    Обсемененность и видовой состав исследуемого биотопа урогенитального тракта женщины зависит от фазы менструального цикла. Обследование женщин целесообразно проводить в первую половину менструального цикла, не ранее 5 –ого дня. Допустимо обследование во второй половине цикла, не позднее, чем за 5 дней до предполагаемого начала менструации. При наличии выраженных симптомов воспаления ,взятие материала проводится в день обращения. Накануне и в день обследования пациентке не рекомендуется выполнять спринцевание влагалища. Не рекомендуется взятие биоматериала на фоне проведения антибактериальной терапии ( общей / местной), применения пробиотиков и эубиотиков, ранее 24-48 часов после полового контакта, интравагинального УЗИ и кольпоскопии. Если для исследования берут соскоб из уретры, сбор материала проводят до или не ранее 2 - 3 часов после мочеиспускания.

     

    Литература

    • Болдырева М.Н., Липова Е.В., Алексеев Л.П., Витвицкая Ю.Г., Гуськова И. А. Характеристика биоты урогенитального тракта у женщин репродуктивного возраста методом ПЦР в режиме реального времени. Журнал акушерства и женских болезней, 2009, том LVIII, выпуск 6, стр 36-42.
    • Плотко Е.Э., Ворошилина Е.С., Хаютин Л.В., Абакумова Е.И., Тумбинская Л.В., Донников А.Е. Репродуктивное поведение женщины и состояние биоценоза влагалища. Уральский медицинский журнал, №10(64), 2009г., стр.150-154.
    • Шипицына Е.В., Мартикайнен З.М., Воробьева Н.Е., Ермошкина М.С., Степанова О.С., Донников А.Е.,Скоркина Ю.А., Тумбинская Л.В., Савичева А.М. Применение теста Фемофлор для оценки микробиоценоза влагалища. Журнал акушерства и женских болезней, №3, 2009г., стр.38-44.
    • Robert P. Nugent et al. Reliability of diagnosing bacterial vaginosis is improved by a standardized method of Gram stain interpretation // Journal of clinical microbiology, Feb. 1991, p. 297-301.
    • Уварова Е.В. and Султанова Ф.Ш., Влагалище как микроэкосистема в норме и при воспалительных процессах гениталий различной этиологии (обзор литературы). Гинекология, 2002. 4(4): p. 189–195.
    • Сухих Г.Т., Прилепская В.Н., Трофимов Д.Ю., Донников А.Е., Айламазян Э.К., Савичева А.М., Шипицына Е.В. Применение метода полимеразной цепной реакции в реальном времени для оценки микробиоценоза урогенитального тракта у женщин (тест Фемофлор). Москва, 2011.
    Показания
    • Наличие субъективных и/или объективных симптомов, связанных с урогенитальным трактом, у женщин репродуктивного возраста вне беременности.
    • Планирование беременности.
    • Репродуктивные потери.
    • Подготовка к экстракорпоральному оплодотворению.
    • Планируемое оперативное вмешательство в области малого таза.
    • Мониторинг эффективности проведённого лечения.
    Исследование предназначено для детальной оценки микробиоценоза влагалища, может быть рекомендовано для проведения комплексного клинического обследования с учётом многоочаговости инфицирования, стёртой клинической симптоматики, риска осложнений. Выявляя этиологическую структуру инфекционно-воспалительного процесса, данное исследование даёт возможность оптимизировать, минимизировать и индивидуализировать терапию, то есть проводить адекватное, этиологически направленное лечение каждого пациента с учётом принципа «необходимости и достаточности».

    См. также: Перечень видов высокотехнологичной медицинской помощи по профилю «Акушерство и гинекология»

    Обратите внимание на учебное пособие для врачей! Урогенитальные инфекции, обусловленные условно-патогенной биотой, у женщин.

     

    Литература

    • Болдырева М.Н., Липова Е.В., Алексеев Л.П., Витвицкая Ю.Г., Гуськова И. А. Характеристика биоты урогенитального тракта у женщин репродуктивного возраста методом ПЦР в режиме реального времени. Журнал акушерства и женских болезней, 2009, том LVIII, выпуск 6, стр 36-42.
    • Плотко Е.Э., Ворошилина Е.С., Хаютин Л.В., Абакумова Е.И., Тумбинская Л.В., Донников А.Е. Репродуктивное поведение женщины и состояние биоценоза влагалища. Уральский медицинский журнал, №10(64), 2009г., стр.150-154.
    • Шипицына Е.В., Мартикайнен З.М., Воробьева Н.Е., Ермошкина М.С., Степанова О.С., Донников А.Е.,Скоркина Ю.А., Тумбинская Л.В., Савичева А.М. Применение теста Фемофлор для оценки микробиоценоза влагалища. Журнал акушерства и женских болезней, №3, 2009г., стр.38-44.
    • Robert P. Nugent et al. Reliability of diagnosing bacterial vaginosis is improved by a standardized method of Gram stain interpretation // Journal of clinical microbiology, Feb. 1991, p. 297-301.
    • Уварова Е.В. and Султанова Ф.Ш., Влагалище как микроэкосистема в норме и при воспалительных процессах гениталий различной этиологии (обзор литературы). Гинекология, 2002. 4(4): p. 189–195.
    • Сухих Г.Т., Прилепская В.Н., Трофимов Д.Ю., Донников А.Е., Айламазян Э.К., Савичева А.М., Шипицына Е.В. Применение метода полимеразной цепной реакции в реальном времени для оценки микробиоценоза урогенитального тракта у женщин (тест Фемофлор). Москва, 2011.
    Интерпретация результатов

    Интерпретация результатов исследования содержит информацию для лечащего врача и не является диагнозом. Информацию из этого раздела нельзя использовать для самодиагностики и самолечения. Точный диагноз ставит врач, используя как результаты данного обследования, так и нужную информацию из других источников: анамнеза, результатов других обследований и т.д.

    Результаты исследования представлены в геном-эквивалентах (ГЭ); количество ГЭ пропорционально количеству клеток микроорганизма.

    Абсолютные количества ГЭ выявленных в образце групп микроорганизмов приводятся в первом столбце бланка выдачи результатов. Однако для большинства микроорганизмов клиническое значение имеют не их абсолютные количества, а соотношение численности групп микроорганизмов в биоценозе влагалища. Относительные количества генетически родственных групп микроорганизмов в ОБМ представлены во втором столбце бланка в двух форматах: в виде десятичного логарифма и в процентах.

    Интерпретация результатов. Для удобства трактовки результатов в таблице использована цветовая маркировка. В зависимости от измеряемого параметра приняты следующие обозначения:

    Контроль взятия материала
    •  
      количество клеток эпителия человека в исследуемом образце более 104 ГЭ/образец (достаточное для анализа количество биоматериала)
    •  
      количество клеток эпителия человека в исследуемом образце менее 104 ГЭ/ образец (НЕ достаточное для анализа количество биоматериала)
    ОБМ
    •  
      106 – 109 ГЭ/ образец (нормальное значение ОБМ)
    •  
      менее 106 ГЭ/ образец (общая бактериальная обсеменённость влагалища низкая)
    Примечание: Нормальные значения ОБМ зависят от исследуемого биотопа. Для цервикального канала возможно изменение этого показателя на порядок меньше (10^5-10^7). 

    Нормофлора
    •  
      доля лактобактерий выше -0,1 Lg (более 80%): нормоценоз
    •  
      доля лактобактерий от -0,7 до -0,1 Lg (20-80%): умеренный дисбиоз
    •  
      доля лактобактерий ниже -0,7 Lg (менее 20%): выраженный дисбиоз
    Факультативно/облигатно-анаэробные микроорганизмы*
    •  
      доля микроорганизмов менее -2 Lg (<1%)
    •  
      доля микроорганизмов от -2 Lg до -1 Lg (1%-10%)
    •  
      доля микроорганизмов от 10% до 40%
    •  
      доля микроорганизмов более 40%
    Микоплазмы (приведены клинически значимые абсолютные количества ГЭ)
    •  
      микроорганизмы НЕ обнаружены
    •  
      микроорганизмы обнаружены в количестве менее 105 ГЭ/образец (ориентировочно соответствует 104 ЦОЕ)
    •  
      микроорганизмы обнаружены в количестве более 105 ГЭ/образец
    Дрожжеподобные грибы (приведены абсолютные количества ГЭ, в составе ОБМ данные микроорганизмы не учитываются)
    •  
      количество грибов ниже порога чувствительности метода (103 ГЭ/образец)
    •  
      количество грибов находится в диапазоне 103-104 ГЭ/образец
    •  
      количество грибов более 104 ГЭ/образец
    Патогенные микроорганизмы
    •  
      микроорганизм НЕ выявлен
    •  
      микроорганизм ОБНАРУЖЕН
    Результаты исследования также представлены в виде диаграммы с логарифмической шкалой, отражающей количества ГЭ соответствующих групп микроорганизмов. На верхней оси обозначены количества микроорганизмов - 0,01%, 1% и 100% от ОБМ. Если доля группы микроорганизмов превышает 1%, соответствующий столбик на диаграмме выделяется цветом группы (менее 1% - цвет серый).

    Цветовое обозначение групп микроорганизмов на диаграмме:
    •  
      общая бактериальная масса
    •  
      нормофлора (Lactobacillus spp.)
    •  
      факультативно-анаэробные микроорганизмы
    •  
      облигатно-анаэробные микроорганизмы
    •  
      микоплазмы
    •  
      дрожжеподобные грибы
    Интерпретация результата всегда проводится лечащим врачом с учётом клинических проявлений и анамнеза заболевания. Результаты исследования микробиоценоза влагалища могут быть применены для женщин репродуктивного возраста. Состояние микробиоценоза влагалища в период менопаузы характеризуется иными значениями физиологической нормы.

    Обратите внимание на учебное пособие для врачей! Урогенитальные инфекции, обусловленные условно-патогенной биотой, у женщин.

    Обращаем внимание, что сроки выполнения ПЦР-исследований могут быть увеличены при проведении подтверждающих тестов.

     

    Литература

    • Болдырева М.Н., Липова Е.В., Алексеев Л.П., Витвицкая Ю.Г., Гуськова И. А. Характеристика биоты урогенитального тракта у женщин репродуктивного возраста методом ПЦР в режиме реального времени. Журнал акушерства и женских болезней, 2009, том LVIII, выпуск 6, стр 36-42.
    • Плотко Е.Э., Ворошилина Е.С., Хаютин Л.В., Абакумова Е.И., Тумбинская Л.В., Донников А.Е. Репродуктивное поведение женщины и состояние биоценоза влагалища. Уральский медицинский журнал, №10(64), 2009г., стр.150-154.
    • Шипицына Е.В., Мартикайнен З.М., Воробьева Н.Е., Ермошкина М.С., Степанова О.С., Донников А.Е.,Скоркина Ю.А., Тумбинская Л.В., Савичева А.М. Применение теста Фемофлор для оценки микробиоценоза влагалища. Журнал акушерства и женских болезней, №3, 2009г., стр.38-44.
    • Robert P. Nugent et al. Reliability of diagnosing bacterial vaginosis is improved by a standardized method of Gram stain interpretation // Journal of clinical microbiology, Feb. 1991, p. 297-301.
    • Уварова Е.В. and Султанова Ф.Ш., Влагалище как микроэкосистема в норме и при воспалительных процессах гениталий различной этиологии (обзор литературы). Гинекология, 2002. 4(4): p. 189–195.
    • Сухих Г.Т., Прилепская В.Н., Трофимов Д.Ю., Донников А.Е., Айламазян Э.К., Савичева А.М., Шипицына Е.В. Применение метода полимеразной цепной реакции в реальном времени для оценки микробиоценоза урогенитального тракта у женщин (тест Фемофлор). Москва, 2011.
    Артикул: 372
    Цена:23 100 драм
    Взятие мазка/соскоба:
    • + 1000 драм
    Итого: 24100 драм
    Сдать анализ «ФЕМОФЛОР-17+КВМ*, соскоб эпителиальных клеток урогенитального тракта» вы можете в Ереване и других городах Республики Армения. Обратите внимание, что цена анализа, стоимость процедуры взятия биоматериала, методы и сроки выполнения исследований в региональных медицинских офисах могут отличаться.
    Наверх